Cuantificación del flavonoide quercetina en miel de Apis mellifera, mediante DMFS – UV-Vis
DOI:
https://doi.org/10.24054/sei.v1i1.748Keywords:
Flavonoides, quercetina, miel, dispersión de matriz en fase sólida, UV-VisAbstract
Este trabajo permitió encontrar el protocolo adecuado para la extracción del flavonoide quercetina en miel producida por la especie Apis Mellifera, obtenida en Carmen de Tonchalá, Norte de Santander. Se establecieron los valores para los parámetros de la técnica dispersión de matriz en fase sólida (DMFS) como: cantidad de muestra, tipo y cantidad de: dispersante, fase estacionaria, y solvente de extracción. La cantidad de quercetina en la muestra se determinó mediante espectrometría UV-Vis. El protocolo más adecuado fue: 0,5 gramos de miel que se trataron con 0,2 gramos del dispersante gel de sílice y 0,4 g de fase estacionaria, además de 4 mL de metanol como eluyente. La cantidad de quercetina encontrada en la miel de Apis mellifera es similar a la reportada por otros investigadores mediante la metodología de extracción en fase sólida (SFE).
References
Alimentarius, C. d. C. (2001). Codex standard for honey
Alvarez-Suarez, J. M., Giampieri, F., & Battino, M. (2013). Honey as a source of dietary antioxidants: structures, bioavailability and evidence of protective effects against human chronic diseases. Current medicinal chemistry, 20(5), 621-638.
Alvarez-Suarez, J. M., Giampieri, F., Gonzalez-Paramas, A. M., Damiani, E., Astolfi, P., Martinez-Sanchez, G., . . . Battino, M. (2012). Phenolics from monofloral honeys protect human erythrocyte membranes against oxidative damage. Food Chem Toxicol, 50(5), 1508-1516. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.fct.2012.01.042
Alvarez-Suarez, J. M., Tulipani, S., Romandini, S., Bertoli, E., & Battino, M. (2009). Contribution of honey in nutrition and human health: a review. Mediterranean Journal of Nutrition and Metabolism, 3(1), 15-23. doi: http://dx.doi.org/10.1007/s12349-009-0051-6
Cao, W., Hu, S. S., Ye, L. H., Cao, J., Pang, X. Q., & Xu, J. J. (2016). Trace matrix solid phase dispersion using a molecular sieve as the sorbent for the determination of flavonoids in fruit peels by ultra-performance liquid chromatography. Food chemistry, 190, 474-480. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.05.133
Capriotti, A. C., C.; Giansanti, P.; Gubbiotti, R.; Samperi, R.; Laganà, A. (2010). Recent developments in matrix solid-phase dispersion extraction. J. Chromatogr. A. , 1217, 2521- 2532. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.chroma.2010.01.030
Chaparro, A. L., Gamboa. D. P., Cardona, Y. Bustamante, J. J., García C. H. (2014). Desarrollo y validación de un método verde para la extracción y cuantificación de residuos de cipermetrina en tejido animal. Revista Colombiana de Química, 43(1), 25-29. doi: http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.quim.v43n1.50537
Diego Checa Rojas, Oscar Rojas Alvarado. (2014). Ontología para los sistemas holónicos de manufactura basados en la unidad de producción. RCTA, ISNN 1692-7257 vol. 1, núm. 23.
de Rijke, E., Out, P., Niessen, W. M., Ariese, F., Gooijer, C., & Udo, A. T. (2006). Analytical separation and detection methods for flavonoids. Journal of Chromatography A, 1112(1), 31-63. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.chroma.2006.01.019
Fahim, H., Dasti, J. I., Ali, I., Ahmed, S., & Nadeem, M. (2014). Physico-chemical analysis and antimicrobial potential of A pis dorsata, A pis mellifera and Z iziphus jujube honey samples from Pakistan. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 4(8), 633-641. doi: http://dx.doi.org/10.12980/APJTB.4.2014APJTB-2014-0095
Fu, M., Xu, Y., Chen, Y., Wu, J., Yu, Y., Zou, B., Xiao, G. (2017). Evaluation of bioactive flavonoids and antioxidant activity in Pericarpium Citri Reticulatae (Citrus reticulata ‘Chachi’) during storage. Food Chemistry. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.03.098
Icontec Internacional (2007). NORMA TÉCNICA COLOMBIANA NTC 1273. Miel de abejas.
Karabagias, I. K., Badeka, A. V., Kontakos, S., Karabournioti, S., & Kontominas, M. G. (2014). Botanical discrimination of Greek unifloral honeys with physico-chemical and chemometric analyses. Food Chemistry, 165, 181-190. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.05.033
Karabagias, I. K., Vavoura, M. V., Nikolaou, C., Badeka, A. V., Kontakos, S., & Kontominas, M. G. (2014). Floral authentication of Greek unifloral honeys based on the combination of phenolic compounds, physicochemical parameters and chemometrics. Food Research International, 62, 753-760. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodres.2014.04.015
Liu, H., Zhang, M., Guo, Y., & Qiu, H. (2016). Solid-phase extraction of flavonoids in honey samples using carbamate-embedded triacontyl-modified silica sorbent. Food chemistry, 204, 56-61. doi: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.02.102
Martos, I., Cossentini, M., Ferreres, F., & Tomás-Barberán, F. A. (1997). Flavonoid composition of Tunisian honeys and propolis. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 45(8), 2824-2829. doi: https://doi.org/10.1021/jf9609284
Muñoz, O., Copaja, S., Speisky, H., Peña, R. C., & Montenegro, G. (2007). Contenido de flavonoides y compuestos fenólicos de mieles chilenas e índice antioxidante. Química Nova, 30, 848-851. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0100-40422007000400017
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